การใช้อัลตราฟิลเตรชันในการผลิตวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าในมนุษย์

เพื่อส่งเสริมการใช้การกรองแบบอัลตราฟิลเตรชันในการผลิตวัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้าในมนุษย์ จึงมีการใช้ตลับเมมเบรนแบบอัลตราฟิลเตรชันขนาด 300kDa เพื่อให้ความเข้มข้นของสารละลายการเก็บเกี่ยวไวรัสโรคพิษสุนัขบ้า และตรวจหาการฟื้นตัวของแอนติเจน อัตราการกำจัดเอนโดท็อกซิน และอัตราการกำจัดโปรตีนโฮสต์หลังจากการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน ผลลัพธ์แสดงให้เห็นว่าภายใต้แรงกดดันที่เหมาะสม สารละลายเก็บเกี่ยวไวรัสโรคพิษสุนัขบ้ามีความเข้มข้น 80 เท่า ชะ 25 เท่า อัตราการฟื้นตัวของแอนติเจนอยู่ที่ 86.2% อัตราการกำจัดเอนโดทอกซินของแบคทีเรียอยู่ที่ 87.5% ~ 88.7% และ อัตราการกำจัดโปรตีนของโฮสต์คือ 91.6%

 

คำนำ

 

โรคพิษสุนัขบ้าเป็นโรคจากสัตว์สู่คนที่มีมาแต่โบราณ เกิดจากไวรัสโรคพิษสุนัขบ้า (RV) โดยมีอัตราการเสียชีวิตสูงถึง 100% ในปัจจุบัน ไม่มีการรักษาที่มีประสิทธิภาพสำหรับภายหลังการสัมผัส (เช่น ความเสียหายต่อผิวหนังและเยื่อเมือก) นอกเหนือจากการฉีดวัคซีนฉุกเฉินและการฉีดวัคซีนอิมมูโนโกลบูลิน แหล่งที่มาหลักของโรคพิษสุนัขบ้าในมนุษย์เกิดจากการถูกสัตว์ที่เป็นโรคหรืออาจติดเชื้อกัด (ส่วนใหญ่เป็นสุนัข) อัตราการตายของโรคพิษสุนัขบ้าในจีนอยู่ในอันดับที่สองของโลก และโรคพิษสุนัขบ้าเป็นปัญหาหนึ่งที่คุกคามความมั่นคงด้านสาธารณสุขในประเทศของเรา ไกลโคโปรตีนแบบแคปซูลของไวรัสโรคพิษสุนัขบ้า ซึ่งเป็นแอนติเจนหลักเพียงชนิดเดียวที่กระตุ้นการผลิตแอนติบอดีที่เป็นกลางในการป้องกัน เป็นจุดสนใจของการวิจัยและพัฒนาวัคซีนใหม่ ตลอดจนเทคโนโลยีการวินิจฉัยและการรักษาโรคแบบใหม่ของไวรัสโรคพิษสุนัขบ้า

 

ไวรัสโรคพิษสุนัขบ้าอยู่ในสกุลไวรัสโรคพิษสุนัขบ้าในตระกูลแรบโดไวรัส รูปร่างของนิวคลีโอแคปซิดนั้นยืดหยุ่นได้ นิวคลีโอแคปซิดนั้นมีความสมมาตรแบบเกลียว และพื้นผิวมีเปลือกที่บรรจุ RNA สายเดี่ยว เป็นเชื้อโรคที่ทำให้เกิดโรคพิษสุนัขบ้า ไวรัสโรคพิษสุนัขบ้ามีแอนติเจนหลัก 2 ชนิด ตัวหนึ่งคือไกลโคโปรตีนแอนติเจนที่เยื่อหุ้มชั้นนอกของไวรัส ซึ่งสามารถจับกับตัวรับอะซิทิลโคลีนเพื่อทำให้ไวรัสเป็นพิษต่อระบบประสาท และผลิตแอนติบอดีที่เป็นกลางและการสร้างเม็ดเลือดแดงที่ยับยั้งแอนติบอดีในร่างกาย และแอนติบอดีที่เป็นกลางจะมี ผลการป้องกัน; อีกประการหนึ่งคือแอนติเจนของไรโบโปรตีนภายใน ซึ่งสามารถทำให้ร่างกายผลิตแอนติบอดีที่เกาะติดและพรีซิพิติน และไม่มีผลในการป้องกัน

 

เอนโดท็อกซินเป็นสารไลโปโพลีแซ็กคาไรด์ชนิดหนึ่ง (LPS) ซึ่งมีความต้านทานความร้อนและความเสถียรทางเคมีและไม่ถูกทำลายง่าย หากมีความเข้มข้นของเอนโดท็อกซินในวัคซีนจะทำให้เกิดไข้รุนแรงและอาจถึงแก่ชีวิตได้หลังการฉีดวัคซีน ดังนั้นปริมาณของเอนโดท็อกซินในวัคซีนจึงควรลดลงให้มากที่สุด เภสัชตำรับจีน (ส่วนที่ 3) ฉบับปี 2548 ระบุว่าค่าควบคุมของดัชนีเอนโดทอกซินของวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าที่ผ่านการรับรองไม่ควรสูงกว่า 100EU/โดส ด้วยการพัฒนาอย่างรวดเร็วของเทคโนโลยีการแยกเมมเบรน การประยุกต์ใช้เทคโนโลยีการแยกเมมเบรนแบบอัลตราฟิลเตรชันเพื่อลดปริมาณเอนโดทอกซินในวัคซีนกำลังแพร่หลายมากขึ้นในอุตสาหกรรมยา

 

วัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้าเป็นวัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้า โดยปกติวัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้ามีสามประเภท ได้แก่ วัคซีนเวโรเซลล์บริสุทธิ์ วัคซีนเซลล์ดิพลอยด์ของมนุษย์ และวัคซีนเพาะเลี้ยงเซลล์ปฐมภูมิ วัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าทำขึ้นโดยการฉีดเชื้อไวรัสโรคพิษสุนัขบ้าแบบคงที่เข้าไปในเซลล์เมทริกซ์ หลังการเพาะเลี้ยง การเก็บเกี่ยว การทำให้เข้มข้น การยับยั้งการทำให้บริสุทธิ์ และเติมสารทำให้คงตัวที่เหมาะสม หน้าที่หลักของวัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้าคือการกระตุ้นร่างกายให้สร้างการตอบสนองทางภูมิคุ้มกันอย่างรวดเร็วและสร้างแอนติบอดีที่ป้องกันไวรัสพิษสุนัขบ้าเพื่อป้องกันการติดเชื้อที่เกิดจากไวรัสและลดความเสี่ยงต่อการเกิดโรค

 

 

กระบวนการผลิตวัคซีนมีบทบาทสำคัญในการรับประกันคุณภาพของวัคซีน โดยเฉพาะการระบุปริมาณของตัวชี้วัดบางประการในกระบวนการผลิตมีความสำคัญมากกว่า ในกระบวนการผลิตวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าในมนุษย์ เทคโนโลยีการกรองแบบเข้มข้นเป็นวิธีที่จำเป็นในการผลิตวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าในมนุษย์ การใช้เมมเบรนกรองแสงแบบรูรับแสงที่เหมาะสมสำหรับความเข้มข้นของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชันสามารถกำจัดเอนโดท็อกซินและโปรตีนโฮสต์ได้อย่างมีประสิทธิภาพ และรักษาแอนติเจน RV ซึ่งเอื้อต่อการผลิตวัคซีนและการปรับปรุงคุณภาพ มวลโมเลกุลสัมพัทธ์ของโมเลกุล RV คือ 350kDa ~ 460kDa และในทางทฤษฎี RV สามารถดักจับได้อย่างสมบูรณ์โดยความเข้มข้นของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชันโดยใช้ตลับเมมเบรนที่มีน้ำหนักโมเลกุลในการสกัดกั้น 100kDa และ 300kDa เอนโดทอกซินมักสร้างโครงสร้างรวมในสารละลายน้ำที่แตกต่างกัน เนื่องจากระดับการรวมตัว ขนาดโมเลกุลจึงแตกต่างกัน มวลโมเลกุลสัมพัทธ์ของโมโนเมอร์เอนโดท็อกซินคือ 10kDa ~ 20kDa และมวลโมเลกุลสัมพัทธ์ของรูปแบบการเกิดพอลิเมอไรเซชันคือ 300kDa ~ 1,000kDa หรือมากกว่า 1,000kDa จากความแตกต่างของน้ำหนักโมเลกุล แอนติเจน RV ในวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าของมนุษย์ยังคงอยู่ และเอนโดทอกซินและโปรตีนโฮสต์ในวัคซีนโรคพิษสุนัขบ้าของมนุษย์ถูกกำจัดออกด้วยเมมเบรนอัลตราฟิลเตรชันขนาด 300kDa

 

ในการทดลองนี้ คาสเซ็ตเมมเบรนแบบกรองอัลตราฟิลเตรชันที่มีรูรับแสง 300kDa และพื้นที่เมมเบรน 0.11 ตร.ม. ถูกนำมาใช้เป็นตัวอย่างการรักษาขนาดเล็กเพื่อรวมผลิตภัณฑ์ตัวกลางของวัคซีนป้องกันโรคพิษสุนัขบ้าของมนุษย์ และฟลักซ์ของเมมเบรน ประสิทธิภาพการรักษา การเพิ่มความเข้มข้น การสกัดกั้นแอนติเจน การกำจัดเอนโดทอกซิน และการกำจัดโปรตีนเจ้าบ้านถูกทดสอบ

 

2วิธีการใช้วัสดุ

 

2.1 วัสดุทดลอง

ไวรัสโรคพิษสุนัขบ้าแก้ไขไวรัสสายพันธุ์ CTN-IV; เซลล์เวโร; 0.5 โมลาร์ โซเดียม ไฮดรอกไซด์; ตลับเมมเบรนกรองอัลตราฟิลเตรชัน 300kDa (วัสดุ PES พื้นที่เมมเบรน 0.11 ตร.ม.)

 

2.2 วิธีการทดลอง

2.2.1 การเตรียมสารละลายดักจับไวรัส

เซลล์ Vero แช่แข็งได้รับการช่วยชีวิตในน้ำอุ่นที่อุณหภูมิ 37 องศา ~ 39 องศา เซลล์แขวนลอยถูกดูดออก จากนั้นเติมลงในอาหารเลี้ยงเชื้อ 199 รายการที่มีซีรั่มลูกวัวที่ไม่ทำงาน 10% เพาะเลี้ยงเซลล์ชั้นเดียวที่สม่ำเสมอที่ 37 องศา สายพันธุ์ CTN-IV ได้รับการเพาะเชื้อด้วยไวรัสโรคพิษสุนัขบ้าที่อัตราส่วน 0.1 โมล/ลิตร และเพาะเลี้ยงที่ 37 องศา หลังจาก 48 ชม. อาหารเลี้ยงเชื้อถูกทิ้งไปและเลี้ยงอาหาร 199 ชนิดที่มีอัลบูมินในเลือดมนุษย์ 0.1% ถูกเติมเพื่อรักษาการเพาะเลี้ยงที่ 33 องศา ~ 35 องศา เก็บเกี่ยวพิษของโรคทุกๆ 3 วัน-5 และรวมของเหลวเก็บเกี่ยวหลายๆ ชนิดเข้าด้วยกัน

 

2.2.2 การติดตั้งตลับเมมเบรน

ติดตั้งตลับเมมเบรนและเชื่อมต่อสายไฟดังแสดงในรูปด้านล่าง

 

2.2.3 การล้างด้วยน้ำ

ปิดวาล์วทางเข้า วาล์วส่งคืน และวาล์วทะลุ จากนั้นใส่ปลายท่อส่งคืนและท่อปลายเข้าไปในถังของเหลวเสีย เติมน้ำ 1 ลิตรลงในถังไอดีเพื่อฉีด

เปิดวาล์วทางเข้าและวาล์วกลับ ปิดวาล์วทะลุ เปิดปั๊ม ทำความสะอาดท่อส่งคืนด้วยน้ำบริสุทธิ์หรือน้ำสำหรับฉีดปริมาตร 10% และรักษาแรงดันทางเข้าไว้ที่ 0.35 บาร์ (5psi)

เปิดวาล์วตัวกรอง ปิดวาล์วส่งคืน และใช้น้ำฉีดที่เหลือเพื่อทำความสะอาดท่อกรอง โดยคง TMP ไว้ที่ 0.35bar

 

2.2.4 การฆ่าเชื้อ

ปิดวาล์วทางเข้า วาล์วส่งคืน และวาล์วเกียร์ และใส่ปลายท่อส่งคืนและท่อปลายเกียร์ลงในถังของเหลวเสีย เติมน้ำยาทำความสะอาด 2 ลิตรลงในถังไอดี

เปิดวาล์วทางเข้าและวาล์วกลับ ปิดวาล์วทะลุ เปิดปั๊ม ทำความสะอาดท่อส่งกลับด้วยโซเดียมไฮดรอกไซด์ 0.5M 200มล. และรักษาแรงดันทางเข้าไว้ที่ 0.35 บาร์ (5psi) .

เปิดวาล์วทะลุ ปิดวาล์วส่งคืน และทำความสะอาดท่อทะลุด้วยน้ำยาทำความสะอาดปริมาตร 200 มล. โดยคง TMP ไว้ที่ 0.35 บาร์

จากนั้นปลายท่อส่งคืนและท่อปลายทะลุจะถูกสอดเข้าไปในถังของเหลวเพื่อทำความสะอาดแบบวนรอบ การทำความสะอาดรอบด้วยอัตราการไหลของเส้นสัมผัสของกระบวนการ 1 ~ 1.5 เท่าเป็นเวลา 30 นาที

ระบายโซเดียมไฮดรอกไซด์ 0.5M แล้วล้างออกด้วยน้ำเพื่อฉีดตาม 2.2.4 จนเป็นกลาง

 

2.2.5 การทดสอบการไหลของน้ำ

เติมน้ำบริสุทธิ์ลงในถังไอดี วัดและบันทึกอุณหภูมิของน้ำในถังไอดี ใส่ปลายกลับเข้าไปในถัง เริ่มต้นปั๊มและปรับความเร็วของปั๊มและวาล์วส่งคืนเพื่อให้ได้ความแตกต่างของแรงดันเมมเบรน 0.35bar (5psi) ใช้กระบอกสูบ วัดและบันทึกอัตราการไหลที่ปลายทะลุในหน่วยมิลลิลิตร/นาที ปรับความเร็วปั๊มและวาล์วส่งกลับเพื่อให้ได้แรงดันต่างเมมเบรน 1 บาร์ (15psi) ใช้กระบอกสูบ วัดและบันทึกอัตราการไหลที่ปลายทะลุในหน่วยมิลลิลิตร/นาที

เพื่อทำให้ค่าการไหลของน้ำเป็นมาตรฐาน ให้หารค่าการไหลของน้ำที่คำนวณได้ด้วยความแตกต่างของแรงดันเมมเบรน และคูณปัจจัยการแก้ไขอุณหภูมิในตารางต่อไปนี้

 

2.2.6 ความเข้มข้นของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน

ล้างน้ำออกจากระบบด้วยบัฟเฟอร์ด้านบน วนเป็นเวลา 5 นาทีเพื่อปรับ pH และความเสถียรของไอออนของระบบ หากจำเป็นต้องปรับอุณหภูมิ ให้ทำต่อจนกว่าอุณหภูมิของระบบจะคงที่

เพิ่มของเหลวป้อนลงในถังไอดี ตั้งค่าอัตราการไหลของฟีด (เช่น 400LMH) และทดสอบอัตราการไหลผ่านที่ค่า TMP ที่แตกต่างกัน จากข้อมูลการทดสอบ เส้นโค้งถูกวาดด้วย TMP เป็นแอบซิสซา และฟลักซ์เป็นพิกัด

วางท่อปลายแหลมลงในภาชนะหรือท่อระบายน้ำที่เหมาะสม เช่น ถังรวบรวมปลายถัง ถังของเหลวเสีย และท่อระบายน้ำในกระบวนการผลิต

บันทึกน้ำหนักเริ่มต้นของของเหลวป้อนลงในถังป้อน เริ่มปั๊มป้อน และค่อยๆ หมุนเวียนของเหลวป้อนเป็นเวลา 3 นาทีถึง 4 นาที การหมุนเวียนสามารถช่วยกำจัดอากาศที่ตกค้างในเส้นทางการไหล จึงเพิ่มประสิทธิภาพการทำงานของฟิล์มได้สูงสุด

เปิดวาล์วทะลุ ค่อยๆ เพิ่มความเร็วปั๊มจนกระทั่งถึงอัตราการไหลในแนวสัมผัสที่เหมาะสมที่สุด และปรับวาล์วส่งคืนเพื่อให้ได้ TMP ที่เหมาะสมที่สุดของระบบ

จากนั้นใส่ท่อลงในภาชนะรวบรวม เริ่มจับเวลาเมื่อของเหลวเข้าสู่ภาชนะ และบันทึกแรงดันขาเข้าและขากลับในช่วงเวลาที่เหมาะสม และบันทึกคุณภาพของของเหลวเมื่อเวลาผ่านไปที่ปลายกลับและปลายผ่านเพื่อคำนวณค่าทันที อัตราการไหล.

ความเข้มข้นของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชันของตัวอย่างจะเสร็จสมบูรณ์เมื่อปริมาตรของเหลวของการป้อนลดลงเหลือปริมาตรความเข้มข้นเป้าหมาย

 

2.2.7 การฟอกไต

ใส่ท่อไอดี ท่อเติม และท่อส่งคืนลงในถังไอดี ใส่ท่อส่งลงในภาชนะรวบรวม และวางภาชนะรวบรวมบนเครื่องชั่งเพื่อเคลียร์

เปิดวาล์วไหลกลับ สตาร์ทปั๊มทางเข้า เปิดวาล์วทะลุ ปรับความเร็วปั๊มและ TMP ให้เป็นค่าที่เหมาะสม เปิดปั๊มเติม รักษาปริมาตรของเหลวในถังไอดีไม่เปลี่ยนแปลง และเริ่มการฟอกไตด้วยปริมาตรเท่ากัน เริ่มต้นจับเวลาเมื่อของเหลวเข้าสู่ภาชนะ และบันทึกความดันที่ปลายทางเข้า ปลายไหลกลับ และมวลของของเหลวในช่วงเวลาที่เหมาะสม และรับอัตราการไหลทันทีโดยการคำนวณ

 

2.2.8 ซีไอพี

ขั้นแรกให้ล้างด้วยบัฟเฟอร์ จากนั้นล้างออกด้วยน้ำสำหรับฉีด (การทำงาน 2.2.3) จากนั้นทำความสะอาดด้วยสารทำความสะอาด (การทำงาน 2.2.4) และสุดท้ายล้างออกด้วยน้ำสำหรับฉีด (การทำงาน 2.2.3)

 

2.2.9 การทดสอบการไหลของน้ำ

การดำเนินการมีดังนี้ 2.4.5.

 

2.2.10 การเก็บรักษาตลับเมมเบรน

การจัดเก็บระยะสั้น (น้อยกว่าหรือเท่ากับ 3 วัน) เก็บตลับเมมเบรนไว้ในฟิกซ์เจอร์ และใช้สารละลายในการจัดเก็บเพื่อวนเป็นเวลา 10 นาทีถึง 15 นาที ปิดวาล์วระบบ ตัดแหล่งจ่ายไฟที่จ่ายให้กับปั๊มของเหลว และตรวจสอบให้แน่ใจว่า ถังทางเข้าของเหลวถูกปิดผนึกอย่างถูกต้อง

หากเวลาจัดเก็บคือ 3 วันถึง 1 เดือน โปรดถอดตลับเมมเบรนออกจากฟิกซ์เจอร์และปิดผนึกไว้ในถุงพลาสติกหรือภาชนะสุญญากาศอื่นๆ เติมสารละลายสำหรับจัดเก็บประมาณ 50 มล. ถึง 100 มล. ลงในถุงพลาสติกหรือภาชนะสุญญากาศแล้วปิดผนึก หรือจะจุ่มลงในสารละลายจัดเก็บโดยตรงก็ได้ ตารางต่อไปนี้แนะนำสภาวะการเก็บรักษา

 

3 ผลลัพธ์และการวิเคราะห์

 

3.1 การตรวจสอบปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อประสิทธิภาพการกำจัดไพโรเจน

ความดันการทำงานของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน: มีการทดสอบ 15 ชุดอย่างต่อเนื่อง ในแต่ละชุด ความดันในการกรองยังคงอยู่ที่ 5, 10, 15 และ 2{{10}} psi ในระหว่างการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชั่น และของเหลวที่เก็บเกี่ยวไวรัสมีความเข้มข้น 30 ครั้งและชะด้วยของเหลวบัฟเฟอร์ (10 เท่าของปริมาตร) อย่างต่อเนื่อง ผลลัพธ์ตามที่แสดงในตารางด้านล่าง อัตราการกำจัดเอนโดทอกซินน้อยกว่า 87.0% อัตราการฟื้นตัวของแอนติเจนคงที่ที่ 86.0% และอัตราการกำจัดของโปรตีนโฮสต์คงที่ที่ 90.0% ซึ่งบ่งชี้ แรงกดดันในการทำงานที่แตกต่างกันมีอิทธิพลเพียงเล็กน้อยต่อผลของการกู้คืนแอนติเจน การกำจัดเอนโดทอกซิน และการกำจัดโปรตีนเจ้าบ้าน

อัตราส่วนความเข้มข้นของการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน: ทำชุดทดสอบ 15 ชุดอย่างต่อเนื่อง ในแต่ละชุด ของเหลวเก็บเกี่ยวไวรัสถูกทำให้เข้มข้น 30 เท่า, 50 เท่า, 80 เท่า และ 100 เท่า ตามลำดับในระหว่างการกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน ความดันการกรองถูกคงไว้ที่ 20 psi และของเหลวบัฟเฟอร์ (10 เท่าของปริมาตร) ถูกชะออกในการไหลต่อเนื่อง ผลลัพธ์ดังที่แสดงไว้ในตารางต่อไปนี้ อัตราการกำจัดเอนโดทอกซินอยู่ในช่วงตั้งแต่ 53.3% ถึง 86.9% อัตราการนำแอนติเจนกลับคืนมายังคงที่ 86.0% และอัตราการกำจัดของโปรตีนเจ้าบ้าน ทรงตัวที่ 91.0% ในการสุ่มตัวอย่างแบบแบ่งส่วน ไม่มีการตรวจพบแอนติเจนในสารละลายการส่งผ่าน และโปรตีนโฮสต์น้อยกว่า 10% ยังคงอยู่ในสารละลายไวรัสเข้มข้น ความเข้มข้นของเอนโดท็อกซินในสารละลายเข้มข้นของไวรัสเพิ่มขึ้นตามระยะเวลาความเข้มข้นที่เพิ่มขึ้น และอัตราการกำจัดเอนโดท็อกซินสูงที่สุดในตัวอย่างที่มีความเข้มข้น 80 เท่า และผู้ผลิตยังสามารถพิจารณาความเข้มข้น 100 เท่า ซึ่งไม่เพียงแต่ ปรับปรุงประสิทธิภาพการผลิตและลดต้นทุน แต่ยังตอบสนองความต้องการในการผลิตวัคซีนอีกด้วย

 

3.2 การสูญเสียฟลักซ์ของตลับเมมเบรนและการฟื้นฟูการทำความสะอาด

หลังการบำบัด อัตราการฟื้นตัวของเมมเบรนฟลักซ์คือ 92.6% อัตราการฟื้นตัวครั้งแรกของตลับเมมเบรนใหม่เป็นปกติ ตามคุณสมบัติการสังเกตปัจจุบันของของเหลวป้อน การคาดการณ์ครั้งต่อไปของครั้งที่สองและ NTH อัตราการฟื้นตัวของฟลักซ์ของตลับเมมเบรนจะใกล้เคียงกับข้อมูลหลังการรักษานี้ และ มีแนวโน้มที่จะมีเสถียรภาพ ภายใน 2 ชั่วโมงของการใช้งานครั้งเดียว การใช้ตลับเมมเบรนจะหมดลงอย่างเหมาะสม และมีเพียง 10% ของฟลักซ์เมมเบรนเท่านั้นที่หมดลงภายใต้การทำงานโดยรวม

3.2.1 การสูญเสียฟลักซ์ในกระบวนการบำบัดตลับเมมเบรน

3.2.2 ผลการทำความสะอาดและการสร้างตลับเมมเบรนใหม่

 

เกี่ยวกับ กิดลิ่ง

 

Guidling Technology เป็นองค์กรเทคโนโลยีขั้นสูงระดับประเทศที่มุ่งเน้นด้านเภสัชภัณฑ์ชีวภาพ การเพาะเลี้ยงเซลล์ การทำให้บริสุทธิ์และความเข้มข้นของชีวเวชศาสตร์ การวินิจฉัยโรค และของเหลวทางอุตสาหกรรม เราประสบความสำเร็จในการพัฒนาอุปกรณ์กรองแบบแรงเหวี่ยง ตลับกรองแบบอัลตราฟิลเตรชันและไมโครฟิลเตรชัน ตัวกรองไวรัส ระบบ TFF ตัวกรองเชิงลึก เส้นใยกลวง ฯลฯ ซึ่งตอบสนองสถานการณ์การใช้งานของชีวเภสัชภัณฑ์ การเพาะเลี้ยงเซลล์ และอื่นๆ ได้อย่างสมบูรณ์ เมมเบรนและตัวกรองเมมเบรนของเรามีการใช้กันอย่างแพร่หลายในด้านความเข้มข้น การสกัด และการแยกการกรองเบื้องต้น การกรองระดับไมโคร การกรองแบบอัลตราฟิลเตรชัน และนาโนฟิลเตรชัน กลุ่มผลิตภัณฑ์มากมายของเรา ตั้งแต่การกรองในห้องปฏิบัติการขนาดเล็กแบบใช้ครั้งเดียวไปจนถึงระบบการกรองการผลิต การทดสอบความปลอดเชื้อ การหมัก การเพาะเลี้ยงเซลล์ และอื่นๆ อีกมากมาย ตอบสนองความต้องการของการทดสอบและการผลิต Guidling Technology รอคอยที่จะร่วมมือกับคุณ!