DEAE โครมาโตกราฟีแบบแลกเปลี่ยนประจุลบแบบอ่อนแอ
โครมาโตกราฟีแบบแลกเปลี่ยนประจุลบแบบอ่อนแอของ DEAE – การแนะนำผลิตภัณฑ์ 1. ภาพรวม โครมาโตกราฟีแบบแลกเปลี่ยนประจุลบแบบอ่อนแอของ DEAE เป็นเทคนิคการทำให้บริสุทธิ์โดยพิจารณาจากความแตกต่างในคุณสมบัติประจุและความหนาแน่นประจุของสารชีวโมเลกุลต่างๆ เนื่องจากชีวโมเลกุลส่วนใหญ่มีฟังก์ชัน...
การแนะนำสินค้า
DEAE Weak Anion Exchange Membrane Chromatography – การแนะนำผลิตภัณฑ์
1. ภาพรวม
โครมาโทกราฟีแบบแลกเปลี่ยนไอออนแบบอ่อนแอของ DEAE เป็นเทคนิคการทำให้บริสุทธิ์โดยพิจารณาจากความแตกต่างในคุณสมบัติของประจุและความหนาแน่นของประจุของชีวโมเลกุลต่างๆ เนื่องจากชีวโมเลกุลโมเลกุลส่วนใหญ่มีหมู่ฟังก์ชัน เช่น หมู่คาร์บอกซิลหรือหมู่ไฮดรอกซิล ลักษณะประจุและขนาดจึงสามารถปรับได้โดยการปรับเปลี่ยน pH ของสารละลายบัฟเฟอร์ หลังจากที่ชีวโมเลกุลจับกับไอออนที่มีประจุตรงข้ามหรือตัวกลางแลกเปลี่ยนแคตไอออน การแยกจะเกิดขึ้นได้โดยการเปลี่ยนความแรงของไอออนิกหรือ pH ของเฟสเคลื่อนที่ โมเลกุลที่มีค่าสัมพรรคภาพในการจับน้อยกว่าจะถูกชะออกก่อน ตามด้วยโมเลกุลที่มีค่าสัมพรรคภาพในการจับมากกว่า ดังนั้นจึงสามารถบรรลุการแยกที่มีประสิทธิผลได้สำเร็จ
2. ข้อดีของผลิตภัณฑ์
2.1 ประสิทธิภาพสูง: ให้การจับยึดที่แข็งแกร่งที่อัตราการไหลสูงกว่าโครมาโตกราฟีแบบเรซิน-ถึง 40 เท่า เมื่อเปรียบเทียบกับโครมาโทกราฟีแบบเบดแบบบรรจุ-แบบดั้งเดิม โครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนจะช่วยลดเวลาในกระบวนการโดยรวมลงประมาณ 30–40 เท่า
2.2 ประสิทธิภาพการจับยึดสูง: โครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนมีความสามารถในการจับยึดสูงและอัตราการไหลสูงภายใต้แรงดันตกคร่อมต่ำ ทำให้สามารถจับชีวโมเลกุลที่มีประจุได้ในการผ่านคอลัมน์เพียงครั้งเดียว
2.3 ปรับขนาดได้และยืดหยุ่น: ผลิตภัณฑ์โครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนครบชุดสามารถตอบสนองความต้องการในการทำให้บริสุทธิ์ทางชีวโมเลกุลได้หลากหลาย ครอบคลุมทุกขั้นตอนตั้งแต่การพัฒนากระบวนการไปจนถึงการผลิตขนาดใหญ่- การออกแบบโครงสร้างแบบแคปซูล-รองรับทั้งการใช้งาน-แบบใช้ครั้งเดียวและนำกลับมาใช้ใหม่หลังการทำความสะอาด
2.4 ผลผลิตที่ได้รับการปรับปรุง: การออกแบบที่กะทัดรัดช่วยลดพื้นที่ในโรงงาน ด้วยการขจัดการบรรจุคอลัมน์ การทำความสะอาด การตรวจสอบการทำความสะอาด และขั้นตอนการจัดเก็บคอลัมน์ ระบบจึงสามารถดำเนินการได้โดยตรงหลังจากการปรับสมดุลบัฟเฟอร์ โดยไม่ต้องมีการบรรจุหรือจัดเก็บคอลัมน์ สามารถลดต้นทุนค่าแรงได้ถึง 50%
3. พารามิเตอร์ทางเทคนิค
3.1 วัสดุโครงสร้าง
|
ขนาดห้องปฏิบัติการ |
ขนาดเล็ก |
ขนาดนักบิน |
ขนาดการผลิต |
|
|
ปริมาณเมมเบรน |
0.2มล |
5มล |
140มล |
5L |
|
โครงสร้างรองรับเมมเบรน |
โพรพิลีน (PP) |
|||
|
ที่อยู่อาศัยเมมเบรน |
โพรพิลีน (PP) |
|||
|
โอริง |
ซิลิโคน |
|||
3.2 ลักษณะการดำเนินงาน
|
ขนาดห้องปฏิบัติการ |
ขนาดเล็ก |
ขนาดนักบิน |
ขนาดการผลิต |
|
|
ปริมาณเมมเบรน |
0.2มล |
5มล |
400มล |
5L |
|
อัตราการไหลที่แนะนำ |
1-6 มล./นาที |
25-150มล./นาที |
2-12 ลิตร/นาที |
25-150 ลิตร/นาที |
|
อุณหภูมิการทำงานสูงสุด |
35 องศา |
|||
|
แรงดันใช้งานสูงสุด |
3bar (25 องศา) |
|||
|
แรงดันต่างสูงสุด |
3bar (25 องศา) |
|||
|
สภาพการเก็บรักษา |
20%乙醇水溶液 20% สารละลายน้ำเอทานอล |
|||

รูปที่ 1 การเปลี่ยนแปลงความสามารถในการโหลดโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนหลังการใช้งานหลายครั้งที่ตรวจสอบด้วย BSA
นอกจากนี้เรายังประเมินประสิทธิภาพการกำจัดโปรตีนเซลล์เจ้าบ้านและกรดนิวคลีอิกโดยใช้โครมาโตกราฟีเมมเบรน DEAE ผลลัพธ์มีดังนี้
|
|
ดีเอ็นเอ |
บุคลากรทางการแพทย์ |
|||||
|
|
การกู้คืน IgG |
เนื้อหา (pg/mg ของ IgG) โดย RT PCR |
ปัจจัยการกำจัด |
เนื้อหา (ng/mg ของ IgG) โดย Elisa |
ปัจจัยการกำจัด |
||
|
วิ่ง |
% |
ก่อน DEAE Membrane |
หลังจาก DEAE Membrane |
บันทึก |
ก่อน DEAE Membrane |
หลังจาก DEAE Membrane |
บันทึก |
|
1 |
96.7 |
423 |
3.5 |
2.08 |
7.8 |
5 |
0.19 |
|
2 |
97.4 |
438 |
6 |
1.86 |
7.7 |
4.9 |
0.20 |
|
3 |
94.7 |
513 |
8 |
1.81 |
6.3 |
1.9 |
0.52 |
|
4 |
95 |
32 |
2 |
1.20 |
6 |
4.2 |
0.15 |
|
5 |
96.3 |
45 |
6 |
0.88 |
8.1 |
5.2 |
0.19 |
|
6 |
96.5 |
158 |
3 |
1.72 |
8.7 |
6.2 |
0.15 |
|
7 |
96.4 |
267 |
2 |
2.13 |
9.8 |
7.1 |
0.14 |
|
8 |
96.8 |
298 |
7 |
1.63 |
9.4 |
8.2 |
0.06 |
|
9 |
97.1 |
746 |
5 |
2.17 |
4.3 |
2.6 |
0.22 |
|
10 |
96.6 |
39 |
2 |
1.29 |
4.4 |
1.7 |
0.41 |
ตารางที่ 1. อัตราการกำจัด DNA และโปรตีนเซลล์เจ้าบ้านออกจาก CHO- IgG แสดงออกโดยใช้ DEAE เมมเบรนโครมาโตกราฟี
การทดลองหลายชุดแสดงให้เห็นว่าโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรน Q สามารถกำจัดสิ่งเจือปนได้อย่างมีประสิทธิภาพ ขณะเดียวกันก็รักษาอัตราการฟื้นตัวของ IgG เป้าหมายไว้ในระดับสูง
นอกจากนี้เรายังเปรียบเทียบ Gudiling Membrane Chromatography กับแบรนด์นำเข้า และข้อมูลความสามารถในการโหลดมีดังนี้

รูปที่ 2 ประสิทธิภาพการโหลดของโปรตีนต่างๆ บนโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนและผลิตภัณฑ์ของคู่แข่ง
การประเมินโดยรวมแสดงให้เห็นว่าความสามารถในการบรรทุกของเราเทียบได้กับสินค้านำเข้า

รูปที่ 3 ประสิทธิภาพของโมดูลโครมาโทกราฟีแบบเมมเบรน DEAE ในการทดสอบโปรตีนคอลลาเจน
การใช้โมดูลโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรน DEAE ผลการตรวจสอบความถูกต้องแสดงให้เห็นว่าโปรตีนคอลลาเจนเป้าหมายส่วนใหญ่สามารถจับและชะออกได้โดยใช้ NaCl 135 มิลลิโมลาร์
จากการทดสอบภายใต้สภาวะการชะที่แตกต่างกัน เราพบว่าโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนและโครมาโทกราฟีแบบเจลอะกาโรสมีพฤติกรรมการชะที่คล้ายกัน โดยที่ความบริสุทธิ์ของโปรตีนจะแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญภายใต้ความเข้มข้นของเกลือที่ต่างกัน ในการวิจัยและพัฒนาและการผลิตเชิงปฏิบัติ จำเป็นต้องกำหนดเงื่อนไขการชะล้างสมดุลที่เหมาะสมในเชิงปริมาณเพื่อให้ได้โปรตีนเป้าหมายที่มีความบริสุทธิ์สูง-
4. กรณีการใช้งานแบบคลาสสิก
กำจัด DNA, ไวรัส, โปรตีนเซลล์เจ้าบ้าน และเอนโดทอกซิน
การจับพลาสมิด ไวรัส กรดนิวคลีอิก และโปรตีน ตลอดจนการทำให้โอลิโกนิวคลีโอไทด์บริสุทธิ์
5. ขั้นตอนการดำเนินงาน
5.1:การเตรียมและประกอบอุปกรณ์
5.1.1 ควรติดตั้งโมดูลเมมเบรนโครมาโตกราฟีบนระบบ AKTA โครมาโตกราฟีในลักษณะคล้ายกับคอลัมน์เรซินที่อัดแน่น เพื่อให้แน่ใจว่าทิศทางการไหลสอดคล้องกับลูกศรและทิศทางทางเข้า เชื่อมต่อโดยใช้ขั้วต่อ Luer หรืออุปกรณ์ยึด
5.1.2 ตั้งค่าอัตราการไหลของทางเข้าเป็น 5–10 MV/นาที และใช้บัฟเฟอร์สมดุลเพื่อไล่อากาศ ล้างต่อไปจนกว่าจะไม่พบฟองที่ทางออก จากนั้นเชื่อมต่อช่องจ่ายเพอมิเอตเข้ากับระบบโครมาโทกราฟี
5.2:ก่อนใช้การรักษา
5.2.1: ตั้งค่าอัตราการไหลเข้าเป็น 5–10 MV/นาที และดำเนินการ-บำบัดล่วงหน้าด้วย 0.5 M NaOH เป็นเวลามากกว่า 5 MV เพื่อให้แน่ใจว่าเมมเบรนจะเข้าสู่สภาวะสมดุล
5.2.2: ภายใต้อัตราการไหลเดียวกัน ให้เตรียม-เพิ่มเติมด้วยบัฟเฟอร์การปรับสมดุล (1× PBS) มากกว่า 5 MV เพื่อให้แน่ใจว่าเมมเบรนจะเข้าสู่สภาวะสมดุล
5.3 กระบวนการโครมาโตกราฟี
5.3.1
ตั้งค่าอัตราการไหลของทางเข้าเป็น 5–10 MV/นาที และ-บำบัดด้วยบัฟเฟอร์การปรับสมดุลล่วงหน้ามากกว่า 5 MV จนกว่าเมมเบรนจะเข้าสู่สภาวะสมดุล
5.3.2
หลังจากที่ตัวอย่างถูกกรองล่วงหน้า-ผ่านตัวกรอง 0.22 μm ให้โหลดตัวอย่างจนกว่าการโหลดจะเสร็จสมบูรณ์หรือถึงความสามารถในการโหลดของโครมาโตกราฟี
5.3.3
ล้างด้วยบัฟเฟอร์ปรับสมดุลมากกว่า 10 MV จนกระทั่งการดูดกลืนแสง UV ลดลงถึงระดับพื้นฐาน
5.3.4
ใช้การชะแบบไล่ระดับหรือการชะเชิงเส้นตามการออกแบบกระบวนการ และเก็บตัวอย่างเป็นเศษส่วนตามที่ต้องการ
5.4,CIP Post-ใช้การบำบัด – CIP ของอุปกรณ์โครมาโตกราฟีแบบเมมเบรน
5.4.1
ตั้งค่าอัตราการไหลเข้าเป็น 5–10 MV/นาที และดำเนินการทำความสะอาด-ใน-การบำบัดแบบแทนที่ (CIP) ด้วย 0.5 M NaOH เป็นเวลามากกว่า 10 MV จนกว่าการดูดกลืนแสง UV จะลดลงต่ำกว่าเส้นพื้นฐาน
5.4.2
หลังจากหมุนเวียนการซักเป็นเวลา 30 นาที ให้เปลี่ยนไปใช้การล้างด้วยน้ำจนกระทั่งค่า pH อยู่ระหว่าง 7–8 จากนั้นจึงทำความสะอาดต่อด้วยเอทานอล 20% จนกว่าค่าการนำไฟฟ้าจะยังคงเกือบคงที่
5.5, การจัดเก็บเมมเบรนโครมาโตกราฟี:
หลังจากใช้งานและเสร็จสิ้น CIP แล้ว โมดูลเมมเบรนสามารถถอดออกและจัดเก็บได้โดยการแช่ในเอทานอล 20% หรือจัดเก็บออนไลน์ที่อุณหภูมิห้องในสารละลายเอทานอล 20% ควรตรวจสอบและเปลี่ยนสารละลายเอทานอล 20% เป็นระยะ
6.ข้อมูลการสั่งซื้อ
ตัวกรองแคปซูลโครมาโตกราฟีแบบเมมเบรนแลกเปลี่ยนไอออนแบบอ่อนชนิด DEAE-
|
ระดับห้องปฏิบัติการ- |
ขนาดเล็ก |
ขนาดนักบิน |
ขนาดการผลิต |
|
|
รุ่นสินค้า |
IEXD0002ES |
IEXD0050ES |
IEXD0400ES |
IEXD5000ES |
|
ปริมาณเมมเบรน |
0.2มล |
5มล |
400มล |
5L |
ป้ายกำกับยอดนิยม: deae อ่อนแอแลกเปลี่ยนไอออนเมมเบรนโครมาโตกราฟี, จีน, ซัพพลายเออร์, ผู้ผลิต, โรงงาน, ขายส่ง, จำนวนมาก, ในสต็อก, ตัวอย่างฟรี
คุณอาจชอบ
ส่งคำถาม












